当前世界环境gydF4y2Ba

介绍gydF4y2Ba

粮食安全是我们今天面临的重大挑战之一。gydF4y2Ba^1gydF4y2Ba尽管如此，农业土地已经过度开放了几个世纪;由于对农艺投入更高的依赖性，Itflutouts是土壤退化，侵蚀和温室气体排放量增加。gydF4y2Ba^2gydF4y2Ba提出的一些提高土壤肥力的方案包括有机改良、免耕耕作、使用生物肥料和综合养分管理系统。gydF4y2Ba^3.gydF4y2Ba自1950年代以来，世界农业产量得到了科学界，以确保粮食安全的努力。但这些现代农业方法导致对环境的有害影响。gydF4y2Ba

每年在全世界提供大约80-90万吨（MT）的氮气（N）肥料。gydF4y2Ba^4gydF4y2Ba为了保持农业生产的可持续性本身就是一个巨大的挑战。然而，在过去几年中，生物肥料出现为综合营养管理体系的必要部分，似乎是增加作物产量和对土壤的自由营养供应的有希望的方法。gydF4y2Ba^5gydF4y2Ba近年来，在建立之间的协会和各种n时已经存在一定的注意力gydF4y2Ba_2gydF4y2Ba修复微生物。gydF4y2Ba^6gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba（AZB）可以是合成肥料的焦炭酯，因为它以氨的形式递送（NHgydF4y2Ba_3.gydF4y2Ba），硝酸盐（没有gydF4y2Ba_3.gydF4y2Ba^-gydF4y2Ba）和氨基酸，这可能是无机氮源的潜在持续性。gydF4y2Ba^7gydF4y2Ba它还有助于维持植物生长和产量，即使在土壤中磷酸盐含量低，也有助于吸收营养素，其使植物根部渗出物的使用。gydF4y2Ba^8gydF4y2Ba

属gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba，属于家庭偶氮橘痛，是异养非共生N-固定细菌的关键组。非共生自由生活gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba大多数植物根际固定gydF4y2Ba^9gydF4y2Ba并且能够固定每G碳水化合物至少10mg N.gydF4y2Ba^{10,11.gydF4y2Ba}固氮菌gydF4y2Baspp最特别的是其固氮能力;尽管它们也因能够提供不同的生长激素(如IAA、赤霉素和细胞分裂素)、维生素和铁载体而闻名。gydF4y2Ba^12.gydF4y2Ba什么时候gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba除了提高生长之外，将种子萌发得到提高到大量的种子。gydF4y2Ba^13.gydF4y2Ba

Brassica oleraceagydF4y2Bal.var.capitata，属的成员gydF4y2Ba芸苔gydF4y2Ba（家庭Brassicaceae）gydF4y2Ba，gydF4y2Ba通常被称为卷心菜，可以作为沙拉食用，也可以通过煮或发酵等不同方式加工食用。gydF4y2Ba^14.gydF4y2Ba卷心菜由于具有抗氧化、抗菌和消炎的特性，在传统医学中有着广泛的用途。gydF4y2Ba^15.gydF4y2Ba它还用于缓解与许多胃肠疾病的症状以及治疗轻微切割和伤口和乳腺炎。gydF4y2Ba^15.gydF4y2Ba种子是一种韧性，利尿剂，泻药和健胃。他们已被用于治疗痛风。gydF4y2Ba^16.gydF4y2Ba白菜皮层中存在的孢子化合物并稳定身体的抗氧化剂和解毒机制，从而消除癌症的物质。gydF4y2Ba^{17,18gydF4y2Ba}由于卷心菜农场通常在白菜农场中使用不漂白的和过度使用，以追求最大收益率。因此，这项研究旨在测试这种替代肥料（gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba)，以降低合成氮的利用。本研究从白菜的重要性出发，研究氮和氮杂b处理对白菜(gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2Bal . var.性)。gydF4y2Ba

材料和方法gydF4y2Ba

正宗的种子gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2BaL. var. capitata[基因型早期黄金英亩(L)和Pusa drumhead (H)]购自新德里IARI。种子表面用0.1%氯化汞溶液消毒3分钟，用无菌蒸馏水洗涤5次，在实验室环境温度27℃风干。在种子萌发3-4周后，在幼树移栽时施用N(以尿素提供)和AzB作为幼苗处理(表1)。gydF4y2Ba

表1：n和n的各种治疗gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba（AZB）（单独和组合）应用于本研究中使用的低和高网入基因型。gydF4y2Ba

分配的名称gydF4y2Ba	治疗适用于gydF4y2Ba
TgydF4y2Ba0gydF4y2Ba	控制gydF4y2Ba
TgydF4y2Ba1gydF4y2Ba	60 kghagydF4y2Ba-1gydF4y2BaNgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba2gydF4y2Ba	60 kghagydF4y2Ba-1gydF4y2BaN + AzBgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba3.gydF4y2Ba	120年kghagydF4y2Ba-1gydF4y2BaNgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba4gydF4y2Ba	120年kghagydF4y2Ba-1gydF4y2BaN + AzBgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba5gydF4y2Ba	180 kgha.gydF4y2Ba-1gydF4y2BaNgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba6gydF4y2Ba	180 kgha.gydF4y2Ba-1gydF4y2BaN + AzBgydF4y2Ba
TgydF4y2Ba7gydF4y2Ba	仅限AZBgydF4y2Ba

将果汁浸入含有液体中gydF4y2Ba

偶氮杆菌gydF4y2Ba（AZB：DW-1：5）移植前。在印度新德里杰米哈迪德草本园里的制备床中的自然场条件下进行了实验。有8张床，包括每次治疗和每个基因型的3张重复。在随机块设计中排列实验，三次重复。根据食品和农业组织的分类（粮农组织罗马）的分类，土壤被归类为Flyviccambisol（腐殖液）。实验区域的土壤特征和气候条件的分别在表2和图1中给出.Plants是在治疗90天后在三个生长阶段进行采样，并在实验框架期间记录结果。gydF4y2Ba

表2：研究区的预处理土壤（0-30厘米）的一些物理化学特性。数据表示平均值±标准偏差（n = 3）。gydF4y2Ba

土壤特性gydF4y2Ba	价值gydF4y2Ba	单元gydF4y2Ba
phgydF4y2Ba	7.21±0.4gydF4y2Ba	-gydF4y2Ba
导电性gydF4y2Ba	0.15±0.06gydF4y2Ba	DS M.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
土壤有机碳gydF4y2Ba	1.62±0.2gydF4y2Ba	G kg.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
阳离子交换能力gydF4y2Ba	20.1±0.9gydF4y2Ba	CMOL kg.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
可用N.gydF4y2Ba	0.43±0.04gydF4y2Ba	G kg.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
可用P.gydF4y2Ba	0.07±0.01gydF4y2Ba	G kg.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
可用K.gydF4y2Ba	0.26±0.08gydF4y2Ba	G kg.gydF4y2Ba-1gydF4y2Ba
C / N比值gydF4y2Ba	3.76±0.12gydF4y2Ba	-gydF4y2Ba

图1:研究区生长季的一些气候条件(2018年8月至2018年12月)gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

参数研究gydF4y2Ba

成长特性gydF4y2Ba

植物仔细挖掘并通过蒸馏水清洁。在12周的阶段，植物和根长度被注意到。通过电子平衡测量射击鲜重（g）。将植物样品在75℃下在烘箱中干燥3天。三天后，再次记录芽和根系干重（G）。通过在68℃下在烘箱中干燥至恒重，通过在烘箱中干燥来确定整个植物的干重。在研究结束时手动计算叶片数量;还测量叶面积。gydF4y2Ba

总叶绿素的估计gydF4y2Ba

光合色素，叶片中的叶绿素A，B和总叶绿素含量通过Hiscox和以色列人的方法估算了新鲜样品中的新鲜样品gydF4y2Ba^19.gydF4y2Ba使用二甲基硫氧化物（DMSO）。含有100mg切碎的叶片在10 MLDMSO中含有100mg切碎的叶子的小瓶被铝箔覆盖并在65℃下保持在烘箱中。将反应混合物在比色皿中取出，最后通过使用UV-Vis分光光度计（印度Systronics）在480,510,645,663nm处读取最终吸光度。gydF4y2Ba

硝酸还原酶(NR)活性gydF4y2Ba

硝酸还原酶(NR)活性测定采用Jaworski完整组织法gydF4y2Ba^20.gydF4y2Ba考虑了NO的减少gydF4y2Ba_3.gydF4y2Ba ^-gydF4y2Ba亚硝酸盐(没有gydF4y2Ba_2gydF4y2Ba ^-gydF4y2Ba）.叶材料(250 mg)悬浮在螺旋盖小瓶中，小瓶中分别含有2.5 mL磷酸盐缓冲液(0.1 M, pH 7.5)、硝酸钾溶液(0.2 M)和异丙醇(5%)，以及2滴氯霉素(0.5%)。玻璃瓶在30°C黑暗中培养约2小时。培养基中NR活性的测定方法是:取0.4 mL孵育液、0.3 mL磺胺(3N HCI中1%)和NEDD(0.02%)。20分钟后，用4 mL蒸馏水稀释溶液，使最终体积达到5 mL，在540 nm处测量光密度。用不同浓度的亚硝酸钾绘制标准曲线并用于计算。gydF4y2Ba

可溶性总蛋白含量gydF4y2Ba

通过Bradford的方法估计不同样品的总可溶性蛋白质含量。gydF4y2Ba^21.gydF4y2Ba将切碎的新鲜叶组织（0.5g）在4℃下粉碎1.5ml磷酸盐缓冲液（0.1μm）。将匀浆在5000rpm下在4℃下以5000rpm离心20分钟。将10％TCA（预冷）的同象加入到0.5ml上清液中，将其在3500rpm下再次离心20分钟。此外，向1ml Bradford的试剂中加入0.2mlalimot。在Beckman分光光度计（Du 640，USA）上的595 nm处注意到吸光度。蛋白质含量以mg g表示gydF4y2Ba^-1gydF4y2Baf.w。gydF4y2Ba

估计的糖gydF4y2Ba

该方法由Dey给出gydF4y2Ba^22.gydF4y2Ba用于估计糖含量。加权0.1g新鲜样品，加入10ml乙醇，将混合物在60℃温育1小时。之后，将1mLOF苯酚加入1ml等分试样中并涡旋。然后，将5ml硫酸加入到后来在空气中冷却的反应混合物中。在485nm测量吸光度。gydF4y2Ba

统计分析gydF4y2Ba

数据表示平均值±标准偏差（SD）。值是三个重复的方法，并且通过SPSS软件（版本22）分析所呈现的平均值，以便单向ANOVA。使用Duncan的多个范围测试（DMRT）估计显着差异gydF4y2BapgydF4y2Ba≤0.05。gydF4y2Ba

结果gydF4y2Ba

增长的属性gydF4y2Ba

株高、叶数和叶面积在不同基因型和不同处理间存在显著差异。两种基因型形态特征的变异情况见表3。gydF4y2Ba

在不同的N浓度下拍摄新鲜和干重中发现了显着差异。发现拍摄的鲜重量显着增加，在施肥中具有升高，最大值在180 kghagydF4y2Ba^-1gydF4y2Ba．还发现它随着植物的增加而降低。因此，开花后阶段的所有治疗中，新鲜重量减少（表4）。芽鲜重量的这种升高可能归因于植物将给定氮的能力归因于蛋白质和其他必要的代谢物。随着年龄越来越多的射击鲜重的秋季可能是由于植物从营养阶段转变为其生命周期的开花阶段，其中植物试图集中并保护其后代而不是累积生物质。gydF4y2Ba

具有类似的趋势之后是根部鲜重。随着我们增加N的剂量，发现新的重量显着增加。根部鲜重的越来越大的是一种证据，因为植物提供更多n，它试图广泛地发展其根系，以吸收更多和更多的营养素，尤其是n。gydF4y2Ba

表3：两种基因型形态特征的变化gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2Ba不同施氮量和氮杂化硼对采收期油菜产量的影响。gydF4y2Ba

治疗gydF4y2Ba	株高(厘米)gydF4y2Ba	叶数gydF4y2Ba	叶面积（厘米gydF4y2Ba2gydF4y2Ba）gydF4y2Ba
控制L.gydF4y2Ba	8.6±0.36egydF4y2Bae)gydF4y2Ba	5±0.82摄氏度gydF4y2Ba	34.4±2.36egydF4y2Ba
控制H.gydF4y2Ba	11.2±1.21 DgydF4y2Ba	7±0.91 dgydF4y2Ba	42.32±2.03 fgydF4y2Ba
60 NgydF4y2Ba一种）gydF4y2BalgydF4y2Bab)gydF4y2Ba	12.66±0.35 dgydF4y2Ba	6±0.39 cgydF4y2Ba	51.02±3.11 dgydF4y2Ba
60 N HgydF4y2Bac)gydF4y2Ba	13.26±0.52摄氏度gydF4y2Ba	9±0.65 cgydF4y2Ba	54.06±2.36 EgydF4y2Ba
60 N + AzBgydF4y2Bad)gydF4y2BalgydF4y2Ba	8.9±0.84 egydF4y2Ba	7±0.81 bgydF4y2Ba	81.6±3.08 cgydF4y2Ba
60 n + azbhgydF4y2Ba	13.6±0.65摄氏度gydF4y2Ba	9±0.36 cgydF4y2Ba	56.18±3.26 egydF4y2Ba
120 n L.gydF4y2Ba	14.2±0.39 cgydF4y2Ba	7±0.85 bgydF4y2Ba	117.3±3.44 bgydF4y2Ba
120 n H.gydF4y2Ba	18.2±0.82 bgydF4y2Ba	11±0.32 BgydF4y2Ba	76.22±4.11 dgydF4y2Ba
120 n + azblgydF4y2Ba	14.6±0.84 cgydF4y2Ba	8±0.25 bgydF4y2Ba	95.12±4.21 cgydF4y2Ba
120 n + azbhgydF4y2Ba	18.9±0.91 bgydF4y2Ba	10±0.44 bgydF4y2Ba	88.16±4.05摄氏度gydF4y2Ba
180 n L.gydF4y2Ba	16.5±0.92 bgydF4y2Ba	7±0.36 bgydF4y2Ba	81.34±3.85 cgydF4y2Ba
180 N HgydF4y2Ba	21.0±0.66 agydF4y2Ba	12±0.32 agydF4y2Ba	133.32±3.66 bgydF4y2Ba
180 N + AzBLgydF4y2Ba	17.2±0.45 agydF4y2Ba	10±0.14 agydF4y2Ba	102.85±3.25 agydF4y2Ba
180 N + AzBHgydF4y2Ba	23.4±0.54gydF4y2Ba	13±0.35 agydF4y2Ba	216.25±4.85 agydF4y2Ba
AZB单独L.gydF4y2Ba	13.1±0.36 dgydF4y2Ba	7±0.22 bgydF4y2Ba	83.43±8.22摄氏度gydF4y2Ba
AZB单独H.gydF4y2Ba	21.2±0.25 agydF4y2Ba	8±0.35摄氏度gydF4y2Ba	149.34±5.26 bgydF4y2Ba

^{一种）gydF4y2Ba}N作为kgha提供gydF4y2Ba^-1gydF4y2Ba

^b)gydF4y2BaL -基因型低(早期黄金英亩)gydF4y2Ba

^c)gydF4y2BaH - 基因型高（Pusa Drumhead）gydF4y2Ba

^d)gydF4y2BaAZB-gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba

^e)gydF4y2Ba不同的小写和大写字母表示显着差异（gydF4y2BapgydF4y2Ba(DMRT≤0.05)gydF4y2Ba

表4：新鲜和干重含量的变化并拍摄两种基因型gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2Ba不同施氮量和氮化硼对收获期大头草的影响。gydF4y2Ba

基因型gydF4y2Ba xgydF4y2Ba 治疗gydF4y2Ba	根鲜重（g）gydF4y2Ba	根干重（g）gydF4y2Ba	鲜苗重量(g)gydF4y2Ba	射击干重（g）gydF4y2Ba
控制L.gydF4y2Ba	7.38±0.66D.gydF4y2Bae)gydF4y2Ba	0.114±0.003 egydF4y2Ba	178.20±3.99e.gydF4y2Ba	23.124±0.108C.gydF4y2Ba
控制H.gydF4y2Ba	6.53±0.83 cgydF4y2Ba	0.265±0.007 dgydF4y2Ba	348.90±7.51 EgydF4y2Ba	95.139±0.079 dgydF4y2Ba
60 NgydF4y2Ba一种）gydF4y2BalgydF4y2Bab)gydF4y2Ba	11.80±0.87 bgydF4y2Ba	0.150±0.013 dgydF4y2Ba	538.50±5.48 dgydF4y2Ba	82.020±0.195 bgydF4y2Ba
60 N HgydF4y2Bac)gydF4y2Ba	8.00±0.36gydF4y2Ba	0.451±0.037 cgydF4y2Ba	1162.83±9.42 dgydF4y2Ba	123.141±0.109摄氏度gydF4y2Ba
60 N + AzBgydF4y2Bad)gydF4y2BalgydF4y2Ba	9.10±0.62 cgydF4y2Ba	0.170±0.005 cgydF4y2Ba	735.67±5.44 cgydF4y2Ba	85.204±0.114 bgydF4y2Ba
60 N + AzB HgydF4y2Ba	6.30±0.50 bgydF4y2Ba	0.458±0.026摄氏度gydF4y2Ba	1362.47±3.91 cgydF4y2Ba	126.272±0.138 cgydF4y2Ba
120 n L.gydF4y2Ba	9.60±0.44 cgydF4y2Ba	0.181±0.005 cgydF4y2Ba	834.20±9.33 bgydF4y2Ba	94.133±0.101 bgydF4y2Ba
120 n H.gydF4y2Ba	7.77±0.74 bgydF4y2Ba	0.714±0.021 BgydF4y2Ba	1742.33±11.91 bgydF4y2Ba	142.184±0.116 bgydF4y2Ba
120 n + azb lgydF4y2Ba	11.80±0.85 bgydF4y2Ba	0.190±0.004摄氏度gydF4y2Ba	882.50±4.14 bgydF4y2Ba	93.336±0.076 bgydF4y2Ba
120 n + azb hgydF4y2Ba	9.17±0.87 agydF4y2Ba	0.724±0.011 bgydF4y2Ba	1823.50±12.73 BgydF4y2Ba	158.206±0.035 bgydF4y2Ba
180 n L.gydF4y2Ba	8.33±1.17 cgydF4y2Ba	0.515±0.004 agydF4y2Ba	957.33±8.04 agydF4y2Ba	121.166±0.149gydF4y2Ba
180 N HgydF4y2Ba	10.87±1.55 agydF4y2Ba	0.942±0.029gydF4y2Ba	1982.80±13.91 bgydF4y2Ba	188.483±0.707 agydF4y2Ba
180 n + azb lgydF4y2Ba	14.23±1.83 agydF4y2Ba	0.541±0.015 agydF4y2Ba	1033.53±4.28 agydF4y2Ba	127.396±0.609 agydF4y2Ba
180 n + azb hgydF4y2Ba	9.87±0.70gydF4y2Ba	0.948±0.016gydF4y2Ba	2302.40±8.31 agydF4y2Ba	198.398±0.118 agydF4y2Ba
AZB单独L.gydF4y2Ba	11.77±0.76 bgydF4y2Ba	0.218±0.011 bgydF4y2Ba	495.97±17.55 dgydF4y2Ba	22.647±0.064 cgydF4y2Ba
AZB单独H.gydF4y2Ba	8.87±0.75 agydF4y2Ba	0.313±0.010 cgydF4y2Ba	1105.17±14.71 dgydF4y2Ba	92.695±0.053 DgydF4y2Ba

^{一种）gydF4y2Ba}N作为kgha提供gydF4y2Ba^-1gydF4y2Ba

^b)gydF4y2BaL -基因型低(早期黄金英亩)gydF4y2Ba

^c)gydF4y2BaH - 基因型高（Pusa Drumhead）gydF4y2Ba

^d)gydF4y2BaAZB-gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba

^e)gydF4y2Ba不同的小写和大写字母表示显着差异（gydF4y2BapgydF4y2BaDMRT≤0.05）分别在G-LOW和G-HIGH的处理之间。gydF4y2Ba

叶绿素含量gydF4y2Ba

发现叶绿素含量随着N个输入增加而增加（图2）。发现在NZB接种的N中生长的植物比它们的对应物具有更大的叶绿素含量。发现基因型高（H）具有比所有处理所述的基因型低（L）具有更多的叶绿素含量。在成长前和开花后阶段之间存在显着差异。在预开花阶段时，发现叶绿素含量增加，但后来发现在开花阶段下降。植物此时植物占用更多氮，以形成许多代谢物。叶绿素含量的显着增加是由于植物将越来越多的可用N和叶绿素分子同化的能力是由于能够进入蛋白质和叶绿素分子。gydF4y2Ba

图2：总叶绿素含量的变化（mg ggydF4y2Ba-1gydF4y2Ba）两种基因型gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2Ba氮、氮梯度处理对头叶草生长的影响。gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

硝酸还原酶(NR)活性gydF4y2Ba

NR活性描绘了重要的（gydF4y2BapgydF4y2Ba≤0.05)gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2Ba在处理后30、45和60 d(图3)，N和AzB组合处理下生长(图3)。叶片在30 d NR活性最高，其次是45和60 d。当施氮量达到120 kg hm2时，NR活性增加gydF4y2Ba^-1gydF4y2Ba但是N申请的进一步增加并不符合NR活性的增加，而是酶变得可饱和的，并且发现NR活性在180 kGHA的所有植物零件中略微降低gydF4y2Ba^-1gydF4y2Ba．它也可能是由于N个利用率的上限和植物性能的原因。此外，存在植物可以容纳的N代谢酶的水平的上限。因此，由于土壤中的充分可用性，该工厂继续硝酸盐摄取，但无法吸收它。这通常导致植物中的硝酸盐积累。gydF4y2Ba

图3：NR活动的变化（μmolnogydF4y2Ba2gydF4y2Ba-gydF4y2BaggydF4y2Ba-1gydF4y2Bafw hgydF4y2Ba-1gydF4y2Ba）在两种基因型的叶子中gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2BaL. var。Capitata在各种鉴别阶段的N和AZB的各种制度中生长。gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

蛋白质含量gydF4y2Ba

蛋白质含量显着增加（gydF4y2BapgydF4y2Ba≤0.05）当我们增加土壤介质中的N浓度（图4）。发现在较高的N个方案下生长的植物将更多的硝酸盐和氨水吸收到蛋白质中，因此在其叶组织中发现了最大蛋白质含量。发现蛋白质含量在植物中在所有处理中补充有AZB的N生长的植物中显着增加。在其不同的酚类年龄的植物中蛋白质含量变化。它被发现在玫瑰花舞阶段是最高的，但发现植物生长的收获阶段降低。gydF4y2Ba

图4：蛋白质含量的变化（mg ggydF4y2Ba-1gydF4y2BaF.W.）两种基因型gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2BaL. var。Capitata在分级N和AZB治疗中种植。gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

可溶性糖含量gydF4y2Ba

施氮和接种AzB对甘蓝可溶性糖浓度有显著影响(图5)。接受N和AzB的甘蓝可溶性糖浓度最高。与对照相比，行施氮肥显著提高了白菜可溶性糖浓度。糖含量在180千卡时最高gydF4y2Ba^-1gydF4y2Ban + azb。可溶性糖的增加是显而易见的，即叶绿素增加糖含量也增加了植物组织。然而，由于植物生长从植物生长到开花期，糖含量在收获阶段的所有处理中较低。发现基因型H在所有治疗中含有含量增加的糖含量。gydF4y2Ba

图5：糖含量的变化（mg ggydF4y2Ba-1gydF4y2BaF.W.）两种基因型gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2BaL. var。Capitata在分级N和AZB治疗中种植。gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

总苯酚内容gydF4y2Ba

总酚含量随施氮量的增加而增加(图6)。N和AzB配施对植株的增加更为显著。在所有处理中，H基因型的酚类含量均高于L基因型。酚类含量在初始至莲座期呈先增加后下降的趋势。添加AzBalone处理后苯酚含量显著高于对照处理。gydF4y2Ba

图6:苯酚含量变化(mg ggydF4y2Ba-1gydF4y2BaF.W.）两种基因型gydF4y2BaBrassica oleraceagydF4y2BaL. var。Capitata在分级N和AZB治疗中种植。gydF4y2Ba 点击此处查看数字gydF4y2Ba

讨论gydF4y2Ba

在农业系统中，氮常被认为是限制植物生长的因素之一。gydF4y2Ba^23.gydF4y2Ba由于氮在植物代谢中的关键作用;人们会假设植物利用它们所有的可用资源来生产生物质能。但是，尽管添加肥料通常可以提高产量，但吸收和同化的效果随着施肥水平的增加而下降。gydF4y2Ba^24.gydF4y2Ba因此，大量的肥料未使用，导致环境和生态危害（如硝酸盐浸出到地下水中，叶状蔬菜中的硝酸盐积累）以及经济损失。gydF4y2Ba^25.gydF4y2Ba因此，作为一种常见的农业做法，过量施用氮肥，一方面会导致硝酸盐在绿叶蔬菜中积累，另一方面又会导致硝酸盐渗入地下水，这两种情况都导致了不希望出现的环境影响。gydF4y2Ba^26.gydF4y2Ba

以增产为主要目的施用化肥，不仅干扰了非靶向微生物的活性，而且影响了白菜的品质。为了减少这些有害影响，微生物接种剂，特别是自由活固氮剂被尝试作为化学氮的替代或补充。gydF4y2Ba^27.gydF4y2Ba微生物菌剂除能减少化肥的不良影响外，还能保持白菜的品质，降低栽培成本。gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba，自由生活的有氧微生物已被用于提高作物的性能，以便为其生长和生产力提供额外的N个优先级。应用gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba会减少对无机氮源的依赖。本试验旨在研究不同施氮量和施氮量对小麦产量的影响gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba结合其互作效应，找出不同处理的最佳组合，以实现白菜生长、产量和品质的最大经济效益。gydF4y2Ba

在本研究中，发现新鲜和干重随着N个输入的增加而显着增加。在n的综合系统中生长的植物中的增加更加明显gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba．植物生长在gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba单独发现新鲜干的重量明显高于对照。新鲜和干重的增加可能归因于进一步补充植物生长的N个可用性量的增加。这些外交所符合razaqet al的意见。gydF4y2Ba^28.gydF4y2Ba和gydF4y2BaKA±咱±lkayagydF4y2Ba^29.gydF4y2Ba据促进生长物质销售，培养生物肥料对作物生长的揭示性作用。gydF4y2Ba

由于使用的结果，产量特征的改善gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba单独或与N肥料组合可能是由于植物植物生长（植物高度，新鲜和干重，叶子数，叶数和总叶绿素）的肥料。gydF4y2BaKA±咱±lkayagydF4y2Ba^28.gydF4y2Ba在马铃薯植物中发现了类似的模式，报告了由于屈服的增加gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba治疗。这种增强可能会令人振奋地增加植物激素等植物激素和嗜酸性植物的产生，以及维生素（生物素，叶酸和维生素B组）。通过处理每单位面积的生产率的增加来增强photopthesis和普选蛋白合成的过程。这些结果与这些结果一致gydF4y2Ba卡哈尔gydF4y2Ba^30.gydF4y2Ba通过种植土豆作物gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2BaAndn治疗。gydF4y2Ba

我们的结果发现NR活性的显着增加，莲座阶段的N含量增加。发现NR活性在叶柄中较低，然后是下叶和中叶和上叶中最高。SAREERET al均报道了类似的结果。gydF4y2Ba^31.gydF4y2Ba在gydF4y2BaAndrographis.gydF4y2BaAndsaffeullah等。gydF4y2Ba^32.gydF4y2Ba在gydF4y2BaB. oleracea。gydF4y2Ba硝酸盐含量也遵循逆向趋势，显示叶柄最大积聚，然后是下叶和中叶和上叶中的最小累积。我们的结果符合Mazaharet Al。gydF4y2Ba^33.gydF4y2Ba

糖含量随着N个治疗而增加，最高达到了gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba．令人悲伤的人是白菜中的类似发现。gydF4y2Ba^34.gydF4y2Ba

具有较高酚类含量的食物的消耗可以检查与人体中氧化应激相关的慢性疾病。gydF4y2Ba^{35,36gydF4y2Ba}与其他植物化学物质一样，作物中的酚类化合物中的酚类化合物可以受到各种因素的影响，例如使用的品种，农业气候特征和储存环境。gydF4y2Ba^{34,37gydF4y2Ba}我们的研究结果表明，总苯酚含量随着浓度的增加而增加。结果在用N +处理的试验植物中更加明显gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba．在莲座期增加最明显，在收获期下降。研究发现，基因型鼓头pusa drumhead比pusa golden acre含有更多的酚类化合物。蔬菜中酚类化合物的含量具有基因型特异性，但施肥方式和施氮量对酚类化合物含量有很大影响。gydF4y2Ba^38.gydF4y2Ba

结论gydF4y2Ba

这项研究的结论是gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba幼苗处理可促进白菜基因型的生长。gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba单独或与N肥料组合显着提高白菜植物中的叶绿素含量，硝酸还原酶活性，蛋白质和苯酚含量，并大大提高了卷心菜基因型的产率。因此，使用gydF4y2Ba固氮菌gydF4y2Ba在综合营养管理系统中，建议在有机农业实践的扩展中有助于扩大，并且由于较大依赖于化学肥料，肥料应用和环境更为植物的成本。gydF4y2Ba

资金来源gydF4y2Ba

第一个作者非常感谢大学助理委员会（UGC），印度授予的财务援助。172000514。gydF4y2Ba

致谢gydF4y2Ba

作者要感谢新德里的Jamiahamdard，授予博士学位。潘什米尔大学植物学院，Jamiahamdard和植物学系，潘什米尔大学植物学系，非常感谢允许实验室工作。作者深刻地感谢大学补助金（UGC），印度财政援助。gydF4y2Ba

的利益冲突gydF4y2Ba

提交人声明他们没有申报利益冲突。gydF4y2Ba

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